Для обеспечения асептической работы необходимо хорошо знать возможные источники попадания микробов в рану. Это два источника: экзогенный и эндогенный.

Экзогенной считается инфекция , попадающая в рану из внешней среды: из воздуха - пыль, капли жидкости (воздушно-капельный путь);

с предметами, соприкасающимися с раной: инструментарий, белье, перевязочный материал, руки хирурга (контактный путь);

Имплантационный путь передачи инфекции . Имплантация – внедрение, вживление в организм больного искусственных чужеродных материалов и приспособлений с определенной лечебной целью. Источниками имплантационной инфекции являются:

Шовный материал;

Дренажные трубки;

Катетеры;

Протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т.д.;

Специальные металлические приспособления (скобки и скрепки из сшивающих аппаратов, спицы, шурупы, пластины для остеосинтеза);

Кава - фильтры, спирали, стенты;

Трансплантированные органы.

Эндогенной называется инфекция, источник которой находится в организме больного. Источники эндогенной инфекции:

 кожные покровы больного;

 желудочно-кишечный тракт;

 ротовая полость;

 очаги «дремлющей» инфекции: кариозные зубы, воспалительные заболевания мочевыводящих путей, хронический тонзиллит, хронический бронхит и т.д.

Пути попадания эндогенной инфекции в рану:

 по кровеносным сосудам (гематогенный),

 по лимфатическим сосудам (лимфогенный);

 непосредственный (контактный)

Профилактика эндогенной инфекции включает выявление возможных очагов эндогенной инфекции и их санация перед выполнением плановой операции.

Если при обследовании выявлен источник эндогенной инфекции (кариес, аднексит и др.), плановую операцию нельзя выполнять до ликвидации воспалительного процесса . После перенесенного инфекционного заболевания запрещается выполнение плановой операции в течение 2-х недель после полного выздоровления.

Принципы организации и планирования хирургического отделения

Принцип соблюдения правил асептики и антисептики лежит в основе организации хирургического стационара . Большинство больниц строится в зеленых, наиболее чистых районах. Хирургические отделения не должны располагаться на первом этаже стационара, по возможности палаты должны быть рассчитаны на 1-2 человек. Площадь палат общехирургического профиля определяется из расчета 6,5 - 7,5 м 2 на одну койку при высоте помещения не менее 3 м и ширине не менее 2,2 м.. Стены должны быть выложены плиткой или окрашены краской. Поверхность стен, полов и потолков помещений должна быть гладкой, без дефектов, легкодоступной для влажной уборки и обработки моющими и дезинфицирующими средствами. Покрытия пола должно плотно прилегать к основанию. Сопряжение стен и полов должно иметь закруглённое сечение, стыки должны быть герметичными. Полы должны быть каменными или заливными, либо покрыты линолеумом.

При использовании линолеумных покрытий края линолеума у стен должны быть подведены под плинтуса. Швы, примыкающих друг к другу листов линолеума, должны быть пропаяны. В вестибюлях полы должны быть устойчивы к механическому воздействию (мраморная крошка, мрамор, мозаичные полы и др).

Ориентация окон палат и лечебно-диагностических кабинетов хирургического отделения может быть любая, соотношение площади окон и пола должна составлять 1:6, 1:7. Температура воздуха в палатах -18-20 0 С, влажность воздуха - 50-60%.

Вентиляция воздуха достигается путем открытия форточек. Для обеззараживания воздуха применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки палат и не менее часа после нее, так как во время уборки в воздух поднимается большое количество бактерий.

В помещениях хирургических стационаров больниц, построенных по современным типовым проектам, устраивается кондиционирование воздуха и механическая приточно-вытяжная вентиляция. Подачу приточного воздуха следует осуществлять сверху вниз, причем расположение приточных и вытяжных отверстий должно быть таким, чтобы исключалась возможность образования в помещении невентилируемых мест.

Мебель должная быть легкой, без сложной конфигурации поверхностей, иметь колесики для передвижения. Количество мебели следует максимально ограничивать в соответствии с потребностями.

В структуру хирургического отделения входят: палаты для больных, пост палатной медсестры, процедурный кабинет, чистая и гнойная перевязочные, санитарная комната, лечебные и диагностические кабинеты, кабинеты заведующего отделением и старшей медсестры, ординаторская, сестринская.

В хирургическом отделении должны быть туалеты, ванная, клизменная, отдельно должны быть туалет и душ для медицинского персонала.

Для кормления больных предусмотрена столовая. В хирургическом отделении кормление больных проводится, согласно, диеты, назначенной врачом. Кормление тяжёлобольных осуществляется средним и младшим медперсоналом.

Важное, значение для профилактики внутригоспитальной инфекции имеет правильное размещение больных в отделении. Чёткое разделение «чистых» и «гнойных» больных.

Обязательно каждому больному выделяют индивидуальные предметы ухода (подкладные судна, утки), которые дезинфицируют после использования каждым больным.

В структуре хирургического отделения с коечным фондом на 30 и более пациентов необходимо иметь две перевязочные - для проведения «чистых» и «грязных» перевязок . В хирургическом отделении, имеющем до 30 коек, допускается наличие одной перевязочной. Очередность перевязок планируется с учетом чистоты раны. При подготовке к работе перевязочной до начала работы проводится влажная уборка помещения перевязочной с обработкой всех поверхностей дезинфицирующими средствами.

Перевязочный стол для пациента (кушетка) дезинфицируют способом протирания и накрывают чистой простыней (пеленкой) перед каждой новой перевязкой.

Медицинская сестра и врач должны работать в халате (при необходимости – и в фартуке), перчатках, шапочке, маске. Предпочтительны халаты однократного применения.

Снятие повязки проводится перевязочной сестрой в чистых (нестерильных) перчатках.

Лечащий врач (оперирующий хирург) проводит перевязку в стерильных перчатках, которые меняет при каждой перевязке.

Все предметы со стерильного перевязочного стола берутся стерильным корнцангом (пинцетом).

По окончании перевязки отработанный материал, использованные перчатки, халаты сбрасывают в ёмкость для сбора отходов класса «Б», и в дальнейшем подвергают дезинфекции и утилизации.

Инструменты многократного применения после перевязки дезинфицируют способом погружения в дезинфицирующий раствор, затем подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации (в ЦСО – при его наличии в лечебной организации).

В конце рабочего дня проводят уборку перевязочной дезинфицирующими средствами. Для обеззараживания воздуха в перевязочных, процедурных кабинетах применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки и не менее часа после нее. Бактерицидная лампа создает вокруг себя стерильную дозу до 2 - 3 метров. Один раз в неделю проводят генеральную уборку в перевязочной, о чем делают запись в журнале регистрации уборок.

Контроль обсемененности разных объектов и воздуха в хирургических отделениях осуществляется 1 раз в месяц. Выборочный контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья и др. проводят 1 раз в неделю.

Для профилактики воздушно-капельной инфекции большое значение имеет соблюдение правил личной гигиены медперсоналом, отстранение от работы сотрудников с простудными и гнойничковыми заболеваниями.

Согласно приказу № 720 1 раз в 3 месяца проводится обследование медперсонала на носительство стафилококка в носоглотке. При положительном ответе сотрудник отстраняется от работы, в течение 3-4 дней закапывает в нос антисептик, регулярно проводит полоскания зева, после чего у него повторно берут мазок из носоглотки.

В профилактике внутригоспитальной инфекции в хирургическом отделении играет роль правильная утилизация отходов и уборка отделения.

Все отходы делятся на 5 групп и подлежат утилизации после соответствующей подготовки.

До введения методов асептики и антисептики послеоперационная смертность достигала 80%: больные умирали от гнойных, гнилостных и гангренозных процессов. Открытая в 1863 г. Луи Пастером природа гниения и брожения, став стимулом развития микробиологии и практической хирургии, позволила утверждать, что причиной многих раневых осложнений также являются микроорганизмы.

В данном реферате будут рассмотрены такие методы обеззараживания как асептика и антисептика.

Эти понятия следует рассматривать в комплексе мероприятий дополняющих друг друга, одно без другому не возымеет наилучшего результата.

Асептика - метод хирургической работы, обеспечивающий предупреждение попадания микробов в операционную рану или развития их в ней. На всех окружающих человека предметах, в воздухе, в воде, на поверхности его тела, в содержимом внутренних органов и т.д. имеются бактерии. Поэтому хирургическая работа требует соблюдения основного закона асептики, который формулируется так: все, что приходит в соприкосновение с раной, должно быть свободно от бактерий, т.е. стерильно.

АНТИСЕПТИКА

Антисептика подразумевает комплекс мероприятий, направленных на уничтожение микробов на коже, в ране, патологическом образовании или организме в целом. Выделяют физическую, механическую, химическую и биологическую антисептику.

При физической антисептике обеспечивают отток из раны инфицированного содержимого и тем самым ее очищение от микробов, токсинов и продуктов распада тканей. Достигается это применением тампонов из марли, дренажей из резины, стекла, пластмассы. Гигроскопические свойства марли значительно усиливаются при смачивании ее гипертоническими растворами (5-10% раствор хлорида натрия, 20-40% раствор сахара и др.).

Применяют открытые методы лечения ран без наложения повязки, что ведет к высушиванию раны воздухом и созданию таким образом неблагоприятных условий для развития микробов. К физической антисептике относится также использование ультразвука, лучей лазера, физиотерапевтических процедур.

Механической антисептикой являются приемы по удалению из раны инфицированных и нежизнеспособных тканей, служащих основной питательной средой для микроорганизмов. Это операции, получившие название активной хирургической обработки раны, а также туалет раны. Имеют большое значение для профилактики развития раневой инфекции.

Химическая антисептика предусматривает вещества с бактерицидным или бактериостатическим действием (например, сульфаниламидные лекарства), оказывающие губительное воздействие на микрофлору.

Биологическая антисептика составляет большую группу препаратов и методик, действие которых направлено непосредственно против микробной клетки и ее токсинов, и группу веществ, действующих опосредованно через организм человека. Так, преимущественно на микроб или его токсины действуют: 1) антибиотики - вещества с выраженными бактериостатическими или бактерицидными свойствами; 2) бактериофаги; 3) антитоксины, вводимые, как правило, в виде сывороток (противостолбнячная, противодифтерийная и др.).

Опосредованно через организм, повышая его иммунитет и тем самым усиливая защитные свойства, действуют вакцины, анатоксины, переливание крови и плазмы, введение иммунных глобулинов, препаратов метилтиоурацила и др.

Протеолитические ферменты лизируют мертвые и нежизнеспособные ткани, способствуют быстрому очищению ран и лишают микробные клетки питательных веществ. По наблюдениям эти ферменты, меняя среду обитания микробов и разрушая их оболочку, могут делать микробную клетку более чувствительной к антибиотикам.

Биологическая антисептика предусматривает использование средств биологического происхождения, а также влияние на иммунную систему макроорганизма. на микробы мы оказываем подавляющее, а на иммунную систему стимулирующее действие. Наиболее крупная группа средств биологического происхождения - антибиотики, как правило, это продукты жизнедеятельности грибков различных видов. Некоторые из них применяются в неизмененном виде, некоторые подвергаются дополнительной химической обработке (полусинтетические препараты), существуют также синтетические антибиотики. Антибиотики подразделяются на различные группы, особенно широко применяется группы пенцилиннов, предложенная еще в 30-е годы Флемингом, а у нас этот препарат был синтезирован группой академика Ермольевой. Введение пенициллина в медицинскую практику вызвало революцию в медицине. То есть болезни, которые были роковыми для человека скажем пневмония, от которой умирали миллионы человек во всем мире стали поддаваться успешному лечению. В хирургии значительно реже стали встречаться гнойные осложнения. Однако неправильно употребление пенициллина в течение 20 лет привело к тому, что уже в 50-е годы сами медики его полностью скомпрометировали. Это произошло потому, что не учитывались строгие показания к применению пенициллина; назначали пенициллин при гриппе, во избежание осложнений - пневмонии, вызванной стафилококками или пневмококками. Или хирурги, делая операцию по поводу паховой грыжи назначали антибиотики во избежание гнойных осложнений. В настоящее время с профилактической целью применять антибиотики нельзя, за исключением случаев экстренной профилактики. Второе обстоятельство - то что его назначали в низких дозах. В результате не все микробы подвергались воздействию пенициллина, а выжившие после применения пенициллина микробы, начинали вырабатывать защитные механизмы. Наиболее известный защитный механизм - это выработка пенициллиназы - ферменты, который разрушает пенициллин. Это свойство характерно для стафилококков. Микробы стали включать антибиотики тетрациклинового ряда в свой метаболический цикл. Выработались штаммы, которые способны жить только в присутствии этих антибиотиков. Некоторые микробы перестроили рецепторы своих клеточных мембран таким образом, чтобы не воспринимать молекулы антибиотиков.

В 60-е годы появилась новая группа антибиотиков - противогрибковые антибиотики. Дело в том, что в результате масштабного применения антибиотиков у людей стали наблюдаться подавление собственной микрофлоры толстой кишки, подавляется кишечная палочка, а она жизненно необходима человеку, например, для усвоения витаминов (К, В12). Недавно был обнаружен еще один механизм взаимодействия организма человека с кишечной палочкой: кишечная палочка всасывается в сосуды кишечных ворсин и по мезентериальным венам попадает в воротную вену, а далее в печень и там убиваются купферовскими клетками. Такая бактериемия в составе крови воротной вены имеет значение для поддержания постоянного тонуса иммунной системы. Так вот при подавлении кишечной палочки нарушаются эти механизмы. Таким образом, антибиотики снижают активность иммунной системы.

В результате того, что нормальная микрофлора, подавляется антибиотиками, может развиваться совершенно необычная для здорового человека микрофлора. Среди этой микрофлоры на первом месте - грибки рода Кандида. Развитие грибковой микрофлоры приводит к возникновению кандидмикоза. У нас в городе ежегодно отмечаются 10-15 случаев сепсиса вызванного канидомикозом. Вот почему появилась группа антигрибковых антибиотиков, которые рекомендуется применять при дисбактериозах. К этим антибиотиками относится леворин, нистатин, метрагил и др.

АСЕПТИКА

Метод хирургической работы, обеспечивающий предупреждение попадания микробов в операционную рану или развития их в ней. На всех окружающих человека предметах, в воздухе, в воде, на поверхности его тела, в содержимом внутренних органов и т.д. имеются бактерии. Поэтому хирургическая работа требует соблюдения основного закона асептики, который формулируется так: все, что приходит в соприкосновение с раной, должно быть свободно от бактерий, т.е. стерильно.

АСЕПТИКА - это комплекс профилактических хирургических мероприятий направленных на предупреждение попадания инфекции в рану. Этого можно добиться путем стерилизации всего того, что с ней соприкасается. Асептику предложил немецкий хирург Бергман. Это произошло на 9 конгрессе хирургов в Берлине. Бергман предложил физические методики обеззараживания - кипячение, обжигание, автоклавирование.

Асептика и антисептика представляют собой единый комплекс мероприятий, их нельзя разделить.

По источнику инфекции делят на экзогенные и эндогенные. Пути проникновения эндогенной инфекции: лимфогенный, гематогенный, по межклеточным пространствам, особенно рыхлой ткани, контактный (например, с хирургическим инструментом). Для хирургов особой проблемы эндогенная инфекция не представляет, в отличие от экзогенной. В зависимости от пути проникновения экзогенная инфекция подразделяется на воздушную капельную, контактную и имплантационную. Воздушная инфекция: так микробов в воздухе не много, вероятность воздушного заражения не велика. Пыль увеличивает вероятность возникновения заражения из воздуха. В основном, меры борьбы с воздушными инфекциями сводятся к борьбе с пылью и включают в себя проветривание и ультрафиолетовое облучение. Для борьбы с пылью применяется уборка. Есть 4 вида уборки:

1. предварительная заключается в том, что с утра до начала операционного дня протирается все горизонтальные поверхности салфеткой, смоченной 0.5% раствором хлорамина.

2. текущая уборка производится в ходе операции и заключается в том, что все что падает на пол немедленно убиралось

3. заключительная уборка - после операционного дня и состоит она из мытья полов и всего оборудования 0.5% раствором хлорамина и включения ультрафиолетовых ламп. Стерилизовать воздух с помощью таких ламп невозможно, а применяются они в месте наибольших источников инфицирования.

4. Проветривание - очень эффективный метод - после него загрязненность микробами падает на 70-80%.

Очень долго считалось что воздушная инфекция не опасна при операциях, однако с развитием трансплантации с применением иммунодепресантов операционные стали делить на 3 класса:

1. первый класс - не более 300 микробных клеток в 1 кубическом метре воздуха.

2. Второй класса - до 120 микробных клеток - этот класс предназначен для сердечно-сосудистых операций.

3. Третий класс - класс абсолютной асептики - не более 5 микробных клеток в кубическом метре воздуха. Этого можно добиться в герметичной операционной, с вентиляцией и стерилизацией воздуха, с созданием внутри операционной зоны повышенного давления (чтобы воздух стремился из операционных наружу). А также устанавливаются специальные двери-шлюзы.

Капельная инфекция - это те бактерии, которые могут выделяться в воздух из дыхательных путей, всех кто находится в операционной. Микробы выделяются из дыхательных путей с водяными парами, водяной пар конденсируется и вместе с этими капельками микробы могут попадать в рану. Чтобы уменьшить опасность распространения капельной инфекции в операционной не должно быть лишних разговоров. Хирурги должны пользоваться 4-х слойными масками, которые уменьшают вероятность инфицирования капельной инфекцией на 95%.

Контактная инфекция - это все микробы, которые способны проникать в рану с каким-либо инструментарием, со всем тем, что соприкасается с раной. Перевязочный материал: марля, вата, нитки переносит высокую температуру, поэтому не должна быть меньше 120 градусов, экспозиция должна составлять 60 минут.

Контроль стерильности. Существует 3 группы способов контроля:

1. Физический: берется пробирка, куда насыпают какое-либо вещество, плавящееся при температуре около 120 градусов - сера, бензойная кислота. Недостаток этого способа контроля состоит в том, что мы видим что порошок расплавился и значить необходимая температура достигнута, но мы не можем быть уверены что она была такой на протяжении всего времени экспозиции.

2. Химический контроль: берут фильтровальную бумагу, помещают ее в раствор крахмала, после чего погружают в раствор Люголя. Она приобретает темно-бурый цвет. После экспозиции в автоклаве крахмал при температуре свыше 120 градусов разрушается, бумажка обесцвечивается. Метод имеет тот же недостаток что и физический.

3. Биологический контроль: это метод самый надежный. Берут образцы стерилизовавшегося материала и сеют на питательные Среды, не нашли микробов - значит все в порядке. Нашли микробы - значит необходимо повторно провести стерилизацию. Недостаток метода в том, что ответ мы получаем только спустя 48 часов, а материал считается стерильным после автоклавирования в биксе в течение 48 часов. Значит, материал используются еще до получения ответа из бактериологической лаборатории.

В последние годы стали применять в основном химические методы обработки рук: широко распространена обработка рук первомуром. Этот методы чрезвычайно надежен: перчаточный сок, образовавшийся в течение 12 часов, после того как надели перчатки (в эксперименте) оставался стерильным.

ОСНОВНЫЕ ПРИНЦИПЫ РАЦИОНАЛЬНОЙ АНТИБИОТИКОТЕРАПИИ

1. Целенаправленно применение антибиотиков: по строгим показаниям, ни в коем случае для профилактической цели

2. Знание возбудителя. Результаты бактериологического исследования появляются только через 12 часов, а человека надо лечить сейчас же. Каждый третий случай хирургической инфекции вызван не монокультурой, а сразу многими возбудителями. Их может быть 3-8 и больше. В этой ассоциации какой-либо из микробов является лидирующим и наиболее патогенен, а остальные могут являться попутчиками. Все это затрудняет идентификация возбудителя, поэтому во главу угла необходимо ставить причину заболевания. Если человеку грозит тяжелое осложнение или смерть, тогда необходимо применять антибиотики резерва - цефалоспорины.

3. Правильный выбор дозировки и кратности назначения антибиотика исходя из поддержания в крови необходимого уровня концентрации антибиотика.

4. Профилактика возможных побочных действие и осложнений. Наиболее распространенно побочное действие - аллергия. Перед применением антибиотика должна быть поставлена кожная проба на чувствительность к антибиотику. Для того чтобы уменьшить опасность токсического действия между антибиотиками. Есть антибиотики, которые усиливают неблагоприятное действие друг друга. Есть антибиотики, которые его ослабляют. Для выбора антибиотиков существуют таблицы сочетаемости антибиотиков.

5. Прежде чем начинать антибиотикотерапию надо выяснить состояние печени, почек, сердца у пациента (особенно при применении токсичных препаратов).

6. Разработка антибактериальной стратегии: необходимо применять а/б в различных комбинациях. Одно и тоже сочетание применять надо не более 5-7 дней, в процессе лечения, если эффекта не наступает, необходимо менять антибиотик на другой.

7. При заболевании человека инфекционной этиологии надо следить за состоянием иммунной системы. Необходимо применять имеющиеся у нас методики исследования гуморального и клеточного иммунитета, чтобы вовремя выявить дефект в иммунной системе.

Есть три пути влияния на иммунитет:

· активная иммунизация, когда вводятся антигены, в хирургии это вакцины, анатоксины.

· Пассивная иммунизация сыворотками, гамма глобулином.

В хирурги широко применяется противостолбнячный, противостафилококковый гамма-глобулины, иммуномодуляция. Применение различных стимуляторов иммунитета: экстракт алоэ, аутогемотерапия и др. методы, но недостаток стимулирующего действия в то, что мы действуем вслепую, не на какой то определенный иммунный механизм. Наряду с нормальными имеют место и патологические иммунные реакции - аутоиммунная агрессия. Поэтому сейчас имеет место не иммуностимуляция, а иммундомодуляция, то есть действие только на дефектное звено иммунитета. Сейчас в качестве иммуномодуляторов используют различные лимфокины, интерлейкины, интерфероны, препараты получаемые из тимуса влияющие на Т-популяцию лимфоцитов. Можно применять также различные экстракорпоральные методики иммуномодуляции: ультрафиолетовое просвечивание крови, гемосорбция, гипербарическая оксигенация и т.п.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Бородин Ф.Р.. Избранные лекции. М.: Медицина, 1961.

2. Заблудовский П.Е. История отечественной медицины. М., 1981.

3. Зеленин С.Ф. Краткий курс истории медицины. Томск, 1994.

4. Сточник А.М. Избранные лекции по курсу истории медицины и культурологии. – М., 1994.

5. Сорокина Т.С. История медицины. –М.,1994.

Асептика (греч. а — без + sëptikos — вызывающий нагноение, гнилостный) — комплекс мероприятий, направленных на предотвращение проникновения микроорганизмов в рану и в организм в целом. Асептика преследует основную цель: защита организма больного и особенно раны от контакта с внешним бактериально зараженной средой, уничтожение микроорганизмов с помощью физических, химических, биологических и механических методов на всем, что может контактировать с раной больного, а также на предметах, которые могут источником распространения внутрибольничной инфекции. Основной закон асептики: «Все, что контактирует с раной, должно быть свободным от бактерий».

Метод асептика является дальнейшим развитием метода антисептики и тесно связанный с ним (см. ). Основоположники А. — немецкие хирурги Э. Бергманн (E. Bergmann) и С. Шиммельбуша (С. Schimmelbush), русские — М.С. Субботин, П.И. Дьяконов. Современная А. предусматривает уничтожение микробов при различных путях передачи инфекции: воздушном, капельном, контактной и имплантационном. Источником воздушной инфекции являются микробные клетки, находящиеся в воздухе. Основой профилактики воздушной инфекции является борьба с запыленностью воздуха в помещении стационара, перевязочных залах, операционных блоках.

Основные мероприятия, направленные на уменьшение воздушной инфекции, сводятся к: 1) оптимального вентилирования операционных и перевязочных (в т.ч. кондиционирования воздуха) 2) ограничение посещения операционных и сокращение передвижения по ним персонала, 3) защиты от статического электричества, которая вызывает рассеяния пыли, 4) влажной уборки помещений, регулярного проветривания и облучение операционной УФ-светом, 5) сокращение времени контакта открытой раны с воздухом.

Капельная инфекция — разновидность воздушной инфекции, когда источником инфицирования является воздух, загрязненный капельками слюны изо рта и дыхательных путей больного и персонала или мелкими каплями других инфицированных жидкостей. Основные мероприятия, направленные на борьбу с капельной инфекцией — запрет разговоров в операционной, обязательное ношение масок, прикрывают рот и нос медперсонала, а также своевременное текущая уборка операционных. Контактная инфекция — инфицирование раны нестерильными инструментами, инфицированными руками, материалами и др..

Профилактика контактной инфекции заключается в стерилизации всего, что соприкасается с раной, вводится в организм человека во время операций, перевьязувань, инъекций и т.п.. Стерилизация проводится физическими и химическими методами. К физическим методам относится тепловая стерилизация: пастеризация, кипячение, стерилизация паром под давлением, сухим жаром; УЗ-и лучевая стерилизация. К химическим методам стерилизации относится применение химических веществ: пары формалина, растворов йода, хлоргексидина биглюконата подобное. Имплантанционная инфекция — инфекция, которая вносится в рану с шовным материалом, тампонами, дренажами, протезами и т.п.

Профилактика такой инфекции состоит в их тщательной стерилизации. Для обеспечения мер асептики чрезвычайно большое значение имеют организационные мероприятия (правильное планирование хирургических отделений и операционных блоков, использование мониторинговых систем для наблюдения за больными) и санация персонала. Знание и строгое соблюдение правил А. всеми сотрудниками является законом работы в хирургической практике.

В фармации создания асептических условий проведения технологического процесса изготовления лекарств имеет свою специфику. Так, необходимо предотвращать контаминации оборудования, помещений, исходного сырья, материалов, промежуточной продукции жизнеспособными микроорганизмами и механическими частицами с целью обеспечения стерильности готовой продукции.

Производство лекарств в асептических условиях в аптеках и на ФП осуществляется в специальных «чистых» помещениях, где нормируется чистота воздуха по содержанию микробных тел и механических частиц. В такие помещения доступ персонала и поступления исходного сырья, материалов, полупродуктов и оборудования разрешается только через воздушные шлюзы. В «чистых» зонах должен поддерживаться надлежащий степень чистоты, а вентиляционный воздух, поступающий в таких зон, должна проходить очистку с использованием фильтров соответствующей эффективности.

Для производства стерильной продукции в асептических условиях на фармацевтических производствах выделяют четыре класса зон чистоты: класс А (зона наполнения, укупорки, смешивание в асептических условиях и др.). Требует минимального риска контаминации с ламинарным потоком воздуха; класс В — окружающая среда для зоны класса А; классы С и D — чистые зоны для проведения других, менее критичных технологических операций.

Для изготовления стерильных лекарств в аптеках необходимо наличие асептического блока, который должен иметь не менее 3 комнат: передасептичну (шлюз), асептическую и аппаратную. Асептические условия изготовления лекарств в соответствующих производственных помещениях аптек и ФП обеспечиваются за счет проведения технологических и санитарных мероприятий: установка стерильной приточной вентиляции и рециркуляционных очистителей воздуха, увеличение кратности воздухообмена, применение бактерицидных излучателей, специальной подготовки помещений и санации персонала.

Понятие об асептике

Асептика – основной закон хирургии. Основоположником асептики считается И.Бергман.Основной закон асептики требует, чтобы всё, что соприкасается с раной, было стерильным, т.е. обеспложенным, лишённым микроорганизмов. Разумеется, это требование полностью относится и к различным пункциям, вливаниям и инструментальным методам исследования, когда оптические приборы вводятся в просвет внутренних органов. Трудами многих поколений хирургов, фармацевтов, медицинских, в первую очередь операционных сестёр, химиков, инженеров, и других специалистов разработана стройная система мероприятий, направленных на практическое осуществление этого закона. Чтобы предупредить загрязнение микробами (инфицирование ран), нужно, прежде всего, знать источники поступления инфекции и в соответствии с их особенностями применить те или другие наиболее подходящие методы.

Принято различать два источника хирургической инфекции: экзогенный (внешний) и эндогенный (внутренний). Хотя эндогенная инфекция встречается значительно реже экзогенной, хирурги постоянно помнят о такой возможности и в предоперационном периоде тщательно изучают больного, чтобы выявить очаги вялотекущей гнойной инфекции и ликвидировать их до операции.

Методы антисептики:

· химический

· физический

· организационно-профилактический

Антисептикой теперь называют мероприятия по борьбе с микроорганизмами, находящимися и развивающимися в органах и тканях больного.

Основоположником систематизированной борьбы с возбудителем в ране является английский хирург Джозеф Листер (1827-1912), который в 1867 г. положил начало антисептическому направлению в хирургии. По его распоряжению в операционной широко применяли карболовую кислоту для обработки раны, инструментов, на рану накладывали семислойную шелковую повязку, пропитанную карболовой кислотой, распыляли в воздухе операционной. В результате таких действий значительно уменьшилось количество нагноений ран, но наблюдались отравления карболовой кислотой у пациентов и персонала.

В современном понимании антисептика – система мероприятий, направленных на уничтожение или снижение количества микроорганизмов в ране, патологическим образованием или организме в целом.

Методы антисептики:

1. Химический – обработка раны растворами антисептиков и применение их для наложения повязок.

2. Физический – дренирование, высушивание раны.

3. Механический – ПХО.

4. Биологический – применение антибиотиков, сывороток (противостолбнячная, противогангренозная), анатоксинов (столбнячный).

ОСНОВНЫЕ АНТИСЕПТИЧЕСКИЕ ВЕЩЕСТВА

1. Галлогеносодержащие вещества:

а) хлорид (Chloracidum) – 0,5% раствор для обработки рук, перчаток, гнойной раны.

б) хлорамин Б (Chloraminum Б) – 3% - для обработки рук, перчаток, гнойной раны, предметов ухода. Для генеральной уборки применяют 5% раствор хлорамина.

в) Sol. Jodi spirituosae 5%, 10% - для обработки краев раны. В операционной в настоящее время раствор йода не применяют, т.к. пары йода оказывают токсическое действие на персонал, вызывая патологию щитовидной железы. Его заменяют раствором йодоната.

г) Jodonati – водный раствор смеси алкисульфата натрия с йодом. 1% раствор разводят перед применением в 3 раза дестиллированной водой.

д) Sol.Lugoli – раствор люголя, раствор йода в спиртовом или водном растворе йодистого калия. Применяют для обработки кетгута.

2. Красители

а) Риванол (Aethacridini lacnas) – этакридина лактат 1:500 – 1:1000 для обработки гнойных ран.

б) Бриллиантовый зеленый (Viridis nitentis) – 0,1 -2% спиртовой раствор применяют для обработки краев ран.

в) Метиленовый синий (Methylenum coerulum) – 1-3% спиртовой раствор. Для лечения ожогов, небольших гнойных очагов, контрастирования свищевых ходов при их иссечении, лечение сепсиса.

3. Окислители

а) Kalii permanganatis – 0,1-0,5% раствор для промывания ран, с целью дезинфекции, как дезодорант 2-5% раствор – дубящее действие

б) Acidum boricum – применяется в ранах с синегнойной палочкой в виде 2% водного раствора, мазей, присыпок.

в) Перекись водорода (Sol. Hydrogeni peroxidati) 33% раствор – пергидроль – для приготовления моющего раствора, а так же является исходным для приготовления растворов другой концентрации: 9%, 6% - для обработки ран, предметов ухода при развитии анаэробной инфекции, для дезинфекции и стерилизации инструментов, 3% раствор (Dilutae) – для промывания гнойных ран. In vitro nigro.

4. Соли тяжёлых металлов.

а) Сулема – ртути хлорид (Hydrargiri dichloridum) – ЯД!!! – подкрашивать раствор!

Раствор 1:1000 для обработки предметов ухода, перчаток

б) Diocidum – 1:5000 раствор для обработки рук

1:1000 для обработки инструментов

Сулему и диоциды в настоящее время не применяют из-за их токсичности.

в) Нитрат серебра (Argenti nitrat) 1:500 – 1:1000 – для промывания ран, мочевого пузыря10% раствор (ляпис) для прижигания избыточных грануляций.

г) Protargolum – оказывает вяжущее, антисептическое, противовоспалительное действие 1-3% раствор применяется для промывания мочевого пузыря

д) Colfargolum – 0,2% раствор применяется для промывания гнойной раны. Препараты серебра необходимо хранить в темноте.

5. Спирты

а) Этиловый спирт (Sp. aethylici) – применяется 96%, а чаще 70% и 80% для обработки рук, инструментов, наложения повязок.

б) Спирт камфорный (Sp. camphorati) – 40% применяется для профилактики пролежней.

в) Нашатырный спирт (Sol. Ammonii caustici) – по своему составу не является спиртом, относится к щелочам. Выпускается в виде 10% и 25%. Применяется 0,5% раствор для туалета кожи вокруг раны, обезжиривания предметов ухода (биксы и т.д.).

6. Формальдегиды

а) Формалин (Formaldehydum solutum) = 40% раствор формальдегида. Входит в состав тройного раствора, который в некоторых местах используют для обработки предметов ухода.

Формалин – 20 г

Карболовая кислота – 10 г

Карбонат натрия – 30 г

Дистиллированная вода – 1000

7. Фенол

а) Фенол – карболовая кислота (Acidum carbocilum) – применяли 3-5% раствор для обработки предметов ухода, инструментов, перчаток, входит в состав тройного раствора. В настоящее время не используется.

б) Деготь (Picis liguidae) – обладает антисептическим, противовоспалительным действием. Входит в состав мази Вишневского. Применяется для лечения гнойных ран и воспалительных процессов.

8. Производные нитрофуранов

а) Фурацилин (Furacilinum) применяется в виде 1:5000 раствора для лечения гнойных ран. Отличается действием на аэробную флору.

б) Фурагин (Furaginum) – 0,1% раствор чаще применяют в торакальной хирургии при заболевании бронхов.

9. Сульфаниламиды

а) Streptocidum – 0,5-1,0 применяют для лечения рожистого воспаления

б) Sulfadimezinum – таблетированный препарат, применяют при лечении хирургической инфекции.

в) Sulfadimethoxinum – см. пункт б.

Часто сульфаниламидные препараты применяют в сочетании с антибиотиками для потенцирования их действия.

10. Антибиотики

Необходимо помнить, что при проведении АБ-терапии учитывается:

· чувствительность микрофлоры

· отсутствие аллергии у пациента

· назначают в больших дозах

· курсы применения могут быть длительными, не только 7 дней

· пути введения различны: per os, подкожно, внутримышечно, внутривенно, в рану в виде растворов и мазей.

а) пенициллин

б) канамицин

в) линкомицин

г) таревит

д) цефазолин

е) цефаперазон

Асе́птика - комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану.

Асептика обладает несомненными преимуществами перед антисептикой в смысле результатов лечения, а также потому, что при асептическом способе лечения ран не бывает отравлений, которые возможны при применении некоторых антисептических средств.

Основное правило асептики заключается в том, чтобы все, что соприкасается с раной, было стерильно, т. е. надежно обеззаражено, свободно от жизнеспособных бактерий.

Стерилизация - это освобождение объектов внешней среды от различных микроорганизмов с помощью физических и химических способов (обеззараживание, обеспложивание). Технология стерилизации включает следующие этапы: дезинфекция, очистка материала, помещение его в контейнеры и стерилизаторы, собственно стерилизация, оценка ее эффективности и хранение стерильного материала. Различают стерилизацию паровую (водяным паром поддавлением), воздушную (горячим воздухом) и газовую (стерилизующим газом), химическую, лучевую (ионизирующим излучением, ультрафиолетовыми лучами).

Паровой метод:

для стерилизации перевязочного материала, белья, инструментов:

2,1 АТМ (температура пара - 132,9° С) - 20 минут. 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (многоразовые шприцы, стекло).

для стерилизации резиновых изделий: 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (каждые 5 мин. продувка).

Воздушный метод:

Для стерилизации стекла, инструментов Сухожаровой шкаф (темп. воздуха - 180° С) - 60 мин. Сухожаровой шкаф (температура воздуха - 160° С) - 150 мин.

Растворами химических соединений (инструменты, эндоскопы): 6% перекись водорода - 6 часов; лизоформин 3000 8% - 1 час;

сайдекс 2% - 10 час; глутаровый альдегид 2,5% - 6 часов.

Газовый метод (стоматологические, хирургические инструменты, иглы для рефлексотерапии и т.д.): окись этилена; формальдегид

Операционное белье и материал (салфетки, бинты, перчатки, шовный материал и др.) стерилизуются и хранятся в специальных коробках-барабанах (биксы Шиммельбуша). Крупные биксы бывают двух типов: без фильтра (с боковыми отверстиями, перекрывающимися металлической лентой-поясом с натяжным замком) и с фильтром (с отверстиями в дне и крышке коробки, перекрытыми текстильными фильтрами - мадеполам, фланель и др.).

К перевязочному материалу относятся салфетки, марлевые шарики, тампоны, турунды, биксы; к операционному белью - халаты, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы.

После подготовки перевязочный материал и операционное белье укладываются в биксы или в полотняные мешки. После стерилизации срокхранения перевязочного материал а и белья в биксах - 48 ч, в мешках - 24 ч (если они не вскрывались).

Неинфицированные инструменты моются проточной водой в течение 5 мин и замачиваются в теплых (до 50 °С) моющих растворах на 15-20 мин. Примерные составы моющих растворов: пергидроль 20 г, стиральный порошок 5 г, вода - 975 мл; 2,5% раствор перекиси водорода - 200 мл, стиральный порошок 5 г, вода - 775 мл. Инструменты моются в таком растворе ершиком и щетками, прополаскиваются теплой водой 5 мин и дистиллированной - 1 мин. Затем в суховоздушном стерилизаторе при температуре 85 °С высушиваются.

Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, помещаются в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем моются в этом же растворе щетками, ополаскиваются проточной водой и далее по изложенной методике для неинфицированных инструментов. Специальной обработке подвергаются инструменты, контактировавшие с анаэробной инфекцией (замочка на 1 ч в 6% растворе перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства, обмывание и кипячение в течение 90 мин, затем - по вышеизложенной методике.

Стерилизация шовного материала может быть проведена в заводских условиях гамма-излучением.

Ампулированные мотки кетгута, шелка, капрона и других нитей хранятся при комнатной температуре и используются при необходимости.

Льняные и хлопчатобумажные нити,лавсан, капрон стерилизуются в автоклаве. Шелк, капрон, лавсан, хлопок стерилизуют также по методу Кохера.

Кетгут стерилизуют после обезжиривания (замачивание в эфире на 24 ч) по методам Клаудиуса (с использованием раствора Люголя и 96% раствора спирта), Губарева (раствора Люголя), Ситковского (в 2% растворе йодида калия) и др.

Контроль за стерильностью медицинских изделий осуществляется бактериологическими лабораториями лечебно-профилактических учреждений и санэпидслужбы.

Классификация хирургического инструментария. Хранение инструментов. Подготовка инструментов к работе. Техника накрывания перевязочного стола в перевязочной. Контроль стерильности инструментов.

Хирургические инструменты можно разделить на инструменты общего назначения и специальные инструменты.

1. Для разъединения тканей : скальпели, ножи, ножницы, пилы, долота, остеотомы, кусачки и др. К режущим инструментам относятся также резекционные ножи, применяемые для разрезания плотных сухожильных тканей вблизи суставов, и ампутационные ножи.

2. Вспомогательные инструменты (расширяющие, фиксирующие и др.: пинцеты анатомические и хирургические; тупые и острые крючки; зонды; большие расширители раны (зеркала); корнцанги, зажимы Микулича и др.

3. Кровоостанавливающие : зажимы (типа Кохера, Бильрота, Холстеда, «Москит» и др.) и лигатурные иглы Дешана.

4. Инструменты для соединения тканей : иглодержатели разных систем с колющими и режущими иглами.

Используемые при манипуляциях хирургические инструменты должны быть стерильными.

Хирургические инструменты передают из рук в руки тупыми концами в сторону принимающего, чтобы режущие и колющие части не травмировали рук. При этом передающий должен держать инструмент за середину.

Большинство хирургических инструментов изготавливается из хромированной нержавеющей стали.

Обработка инструментов

Этап I - предстерилизационная подготовка. * Моют в проточной воде в течение 5 минут.* Замачивают в специальном моющем растворе при температуре 50?C на 15 – 20 минут. Моющий раствор: 0,5 % порошок, 1 л воды, перекись 3 %.* Моют в том же растворе щеткой. * Ополаскивают в течение 5 минут теплой водой. * Прополаскивают в дистиллированной воде 1 минуту.* Проба на порошок - фенолфталеиновая. * Проба на кровь - бензидиновая.

Этап II - укладка и подготовка к стерилизации. В сухожаровом шкафу: Помещают в металлические коробки, укладывая вертикально в один слой. Крышки от коробок стерилизуют рядом.В автоклавах: Заворачивают в вафельное полотенце в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку.

Этап III - стерилизация. В сухожаровом шкафу стерилизуются инструменты, стеклянная посуда:* Укладывают на полки. * Включают подогрев. * Доводят до 80 – 85?C при открытой дверце. * Просушивают 30 минут. * Закрывают дверцу.* Доводят до 180 0 C. * Стерилизуют 1 час. * После снижения температуры до 70 – 75 0 C открывают дверцу.* Стерильным инструментом закрывают металлические коробки с инструментами крышкой. * Спустя 15 – 20 минут камеру разгружают.

В автоклаве стерилизуются инструменты, системы, перчатки. Инструменты: при 2 атм. - 20 минут, 132 є.

Этап IV - хранение стерильного материала. Хранят в отдельном помещении. Стерильность в биксах - 48 часов. Если инструменты, обернутые в материал, стерилизовались в биксах - 3 суток.

Перевязочная сестра получает список всех перевязок на день, устанавливает их очередность. В первую очередь перевязывают больных с гладким послеоперационным течением (снятие швов), затем с гранулирующими ранами. Убедившись в готовности перевязочной, сестра приступает к обработке рук.
Предварительно она надевает операционную форму, тщательно прячет волосы под косынку или шапочку, коротко подстригает ногти, надевает маску. После обработки рук сестра одевается. Она берет из бикса халат, не касаясь им краев бикса. Осторожно развернув его на вытянутых руках, она надевает его, завязывает тесемками рукава халата и прячет тесемки под рукав. Открывает биксы и завязывает сзади тесемки халата санитарка перевязочной. После этого сестра надевает стерильные перчатки и накрывает инструментальный стол. Для этого она достает из бикса стерильную простыню и стелет ее, сложенную вдвое, на инструментальный стол. Санитарка открывает стерилизатор, крючками извлекает из стерилизаторов сетки с инструментами, дав стечь воде, ставит осторожно сетки на угол инструментального стола, покрытого простыней. При стерилизации воздушным способом в крафт-бумаге медсестра должна выяснить предварительно дату стерилизации. Изделия, простерилизованные в крафт-бумаге, могут храниться не более 3-х суток.
Инструменты следует раскладывать в определенном порядке, который перевязочная медсестра выбирает сама. Обычно инструменты раскладывают на левой стороне стола, перевязочный материал - на правой стороне, в середине размещают специальные инструменты и дренажные трубки. Здесь же сестра ставит стерильные банки для новокаина, перекиси водорода, фурацилина. Правый угол сестра оставляет свободным для приготовления наклеек и повязок во время перевязки. Простыней, сложенной вдвое, сестра закрывает инструментальный стол. Подготовительная работа должна быть закончена к 10 ч