АСЕПТИКА
Выполнила: студентка 121-III СД
Бычкова Анна
Проверил преподаватель по хирургии:
Абдурасулов Дмитрий Евгеньевич
2016 год
Г.Нижний Новгород

Асептика

- совокупность методов и приёмов работы,
направленных на предупреждение попадания инфекции
в рану, в организм больного, создание безмикробных,
стерильных условий для хирургической работы путём
использования организационных мероприятий, активных
обеззараживающих химических веществ, а также
технических средств и физических факторов.

История асептики

В 1885 году русский хирург М.С. Субботин
впервые оборудовал специальную
операционную, в которой производил
стерилизацию перевязочного материала,
чем по существу и положил начало
новому методу, названному асептикой.
В последующие годы Э.Бергман детально
разработал и предложил метод асептики.
Используя открытия Л. Пастера,
совместно со своим учеником
Шиммельбушем он обосновал методику
уничтожения микробов на всем, что
соприкасается с операционной раной. В
связи этим Э. Бергман считается
основателем асептики.

Принципы асептики

Следует особо подчеркнуть значение организационных
мероприятий: именно они становятся определяющими. В
современной асептике сохранили своё значение два
основных её принципа:
всё, что соприкасается с раной, должно быть
стерильно;
всех хирургических больных необходимо разделять на
два потока: «чистые» и «гнойные».

Экзогенная инфекция

Инфекцию, попадающую в рану из внешней среды,
называют экзогенной. Основные её источники: воздух с
частицами пыли, на которых оседают микроорганизмы;
выделения из носоглотки и верхних дыхательных путей
больных, посетителей и медперсонала; раневое
отделяемое из гнойных ран, различные бытовые
загрязнения.

Эндогенная инфекция

Инфекцию, попадающую в рану из организма
самого больного,
называют эндогенной. Основные её источники:
кожа пациента, внутренние органы,
патологические очаги.

Профилактика воздушно-капельной инфекции

1. Изолированное от других подразделений лечебного учреждения
размещение операционного блока с прохождением в него персонала
через специальное помещение с душевыми, с полной сменой белья.
2. Строгое соблюдение правил ношения операционной одежды.
3. Ограничение числа лиц находящихся в операционной и по
возможности ограничение передвижений.
4. Подача воздуха в операционные через систему кондиционеров,
оснащенных бактериальными фильтрами. Возможно использование
передвижных циркуляционных воздухоочистителей, которые
производят 40-кратный обмен воздуха в час.
5. Постоянное облучение отраженными ультрафиолетовыми лучами
(бактерицидными лампами) всех помещений операционного блока и
создание ультрафиолетового тамбура при входе в операционную.
Дезинфекция воздуха операционной бактерицидными лампами в
период между операциями.

6. Покрытие стен, потолков и полов операционных
водостойкими материалами, гладкими, без щелей,
допускающих многократную дезинфекцию.
7. Влажная уборка операционной с использованием 3%
раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющего
средства 8. Поддерживание в операционной
температуры на уровне 22 - 25°С при влажности 50%.
9. Систематическая дезинфекция наркозных аппаратов
в специальных дезинфекционных камерах химическим
методом. Выведение выдыхаемого больным воздуха из
наркозного аппарата за пределы операционной.
10. Предоперационная санация полости рта у планово
оперируемых больных.

Профилактика воздушно- капельной инфекции

11. Систематическое обследование у персонала
верхних дыхательных путей на носительство
патогенных штаммов бактерий и лечение
бактерионосителей.
12. Обязательное ношение в операционной масок.
Лучше использовать одноразовые маски из
специальной бумажной ткани или четырехслойные
марлевые маски, вымоченные перед стерилизацией в
растворе антисептика (хлоргексидин, роккал).
13. Для предупреждения проникновения бактерий
через халат, особенно при увлажнении последнего,
использовать для изготовления операционных
халатов и операционного белья хирургов нетканые
материалы, непроницаемые для организмов.

10. Профилактика контактной инфекции

Достигается стерилизацией
операционного белья,
перевязочного материала,
хирургических инструментов,
подготовкой к операции
хирургов, подготовкой к
операции операционного поля.
Стерилизация – мероприятие,
обеспечивающее полное
уничтожение микробов и спор.

11. Профилактика внутрибольничной инфекции

Внутрибольничная инфекция – заболевания или
осложнения, развитие которых связано с
инфицированием больного во время нахождения
его в хирургическом стационаре.
Пути распространения: контактно от больного к
больному, от персонала и посетителей к
больному и наоборот.
Среди форм внутрибольничной инфекции чаще
встречаются: инфекция мочевых путей (40%),
раневая (25%), дыхательной системы (16%),
септицемия (3-5%).

12. Профилактика внутрибольничной инфекции

В связи с этим мероприятия основные мероприятия по
борьбе с внутрибольничной инфекцией включают в
себя:
1. Сокращение предоперационного койко-дня;
2. Сокращение длительности послеоперационного
периода, ранняя выписка пациентов с контролем на
дому;
3. Разделение потоков больных, гнойных и чистых
палат, отделений, операционных и оборудования;
4. Предупреждение перекрестного инфицирования:
внедрение одноразового белья, полотенец, перчаток;
5. Дезинфекция рук персонала и врачей перед прямым
контактом с больным и после него;
6. Дезинфекция матрацев, подушек, одеял и др.;
7. Рациональное назначение антибиотиков;

13. Стерилизация

(sterilis - бесплодный,
лат.) - полное освобождение какоголибо предмета от микроорганизмов и
их спор путём воздействия на него
физическими или химическими
факторами.
Физические методы:
Стерилизация паром под давлением
(автоклавирование)
Стерилизация горячим воздухом (сухим
жаром)
Ионизирующая стерилизация
Химические методы:
Газовая стерилизация
Стерилизация растворами
антисептиков
Механические методы

14. Автоклавирование

Стерилизирующим фактором является тепловой удар,
приводящий к коагуляции белка бактерий, и
непосредственное действие сухого пара на бактерии,
при отсутствии воздуха путем гидратирования и
гидролиза белков. Паровые стерилизаторы
обеспечивают стерилизацию изделий из тканей
(давление 2,0 кгс/см; температура 134оС, время 20
мин.), стерилизацию растворов (давление 1,0 кгс/см;
температура 120оС, время 30 мин.), стерилизацию
резиновых изделий (давление 0,7 кгс/см;
температура 120оС, время 20 мин.). 1 кгс/см равен
примерно 1 атмосфере.

15. Сухожаровая стерилизация

Сухожаровая стерилизация. В сухожаровые стерилизаторы
инструменты помещают либо в специальных
крафтпакетах, либо на специальном металлическом
поддоне, которым оснащен аппарат, либо на керамике.
Температура 110-300 градусов, время стерилизации – от
15 до 60 минут. В любой термостерилизатор можно
класть инструменты только абсолютно сухими, нельзя
вынимать инструменты, не дав им остыть в
стерилизаторе.

16. Газовая стерилизация

Для газовой стерилизации наибольшее признание получили
окись этилена, смесь окиси метилена с бромидом метила и
формальдегид. Окись этилена и ее пары обладают высокими
бактерицидными действиями. Стерильность объектов
наступает через 2-4 часа. Смесь окиси этилена и бромида
метила в соотношении 1:1,4 применяется для стерилизации
медицинских изделий, изготовленных из термолабильных
материалов (резина, пластмассы, оптические приборы).
Бромид метила значительно снижает взрывоопасность смеси.
Формальдегид вводится в стерилизационную камеру вместе с
насыщенным водяным паром, температура стерилизации 5080оС. Газовая стерилизация позволяет стерилизовать сложные
аппараты и приборы, не разбирая их на части (аппарат
искусственного кровообращения, наркозные аппараты,
аппараты искусственной вентиляции легких и т.п.).

17. Стерилизация растворами антисептиков

Бианола 20% или
Гигасепта ФФ 10%,
используются однократно,
время выдержки10 ч.
Лизоформина-3000 8% или
Деконекса 50 Плюс 8%,
используются однократно,
время выдержки 1 ч.
Сайдекса, можно
использовать не
одноразово в течение 14
суток, время выдержки 3-5
ч.

18. Стерилизация ионизирующим излучением

Используют бактерицидные действия гаммалучей (радиоактивные изотопы кобальт-60 и
цезий-137). Стерилизация проникающей
радиацией осуществляется в специально
созданных установках, с мощной защитой от
проникающей радиации, специально обученным
персоналом. Применяется на предприятиях
медицинской промышленности,
заготавливающих стерильные материалы
длительного хранения.

19. Стерилизация хирургических инструментов

Предстерилизационная подготовка хирургических инструментов,
бывших в употреблении, осуществляется следующим образом:
1. Бывшие в употреблении, но не инфицированные инструменты моют
проточной водой щетками в течение 5 минут, затем замачивают в
растворе А (пергидроль - 20,0, ПАВ "Астра" - 5,0; вода - 975 мл.)
при 50 0С – на 15-20 минут.
2. Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым,
помещают в 5% раствор лизола на 30 минут.
3. Инструменты и шприцы после операции у больного с анаэробной
инфекцией замачивают в 6 % растворе перекиси водорода + 0,5 %
раствор ПАВ "Астра" на 1 час, затем кипятят 90 минут.
В настоящее время с целью профилактики ВИЧ-инфекции все
инструменты после использования перед прохождением обычной
предстерилизационной подготовки должны быть замочены в 3% рре хлорамина в течение 60 минут или в 6% р-ре перекиси водорода в
течение 90 минут (приказ № 86 от 30.08.89 МЗ СССР).

20. Стерилизация нережущих металлических предметов

1. Стерилизации в сухожаровом шкафу
при t - 180-200 0 C в течение 60 минут.
2. Автоклавирования при давлении в 2
Атм (132,9 град. С.) в течение 20
минут.
3. Кипячения в дистиллированной воде с
добавлением натрия гидрокарбоната
(20 гр. на 1 литр воды) – 45 минут.
Инструменты после операций по поводу
анаэробной инфекции и в группе
риска по гепатиту или ВИЧ-инфекции
кипятить нельзя.

21. Стерилизация режущих и колющих инструментов

Режущие и колющие инструменты кипятят в течение 3-х
минут без добавления гидрокарбоната натрия, затем
погружают в 96 % этанол на 2 - 3 часа.
Кипячение шприцов осуществляется в разобранном виде в
бидистиллированной воде в течение 45 минут.
Стеклянная часть шприца при этом обертывается
марлей.
Согласно приказу МЗ N 720 от 31.07.78 инструментарий,
используемый во время операции, рекомендуется
стерилизовать в сухожаровых шкафах при температуре
180 0С в течение 1 часа. В таких же условиях должны
стерилизоваться и режущие инструменты, что приводит
к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает
абсолютную стерильность.

22. Стерилизация одноразовых инструментов

Одноразовые инструменты (пинцеты, зажимы,
зонды, скальпели) стерилизуются с помощью
ионизирующего излучения в заводских
условиях.

23. Стерилизация оптических приборов

Основным методом стерилизации оптических инструментов,
требующих наиболее щадящей обработки с исключением
нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом
обрабатываются все инструменты для лапароскопических и
торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным
устройством и дороговизной.
Для этого используется:
· стерилизация окисью этилена при концентрации газа 555 мг/л в
течение 16-16 часов;
· стерилизация в формалиновой камере, на дно которой кладут
таблетки формальдегида, в течение 48 часов.
При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов,
колоноскопов применяется замачивание в 2% р-ре
глютарового альдегида (активатор) и гипохлорида натрия
(ингибитор коррозии) в течение 45-180 минут.

24. Стерилизация перевязочного материала и белья

Перевязочный материал и белье стерилизуют в
автоклаве при давлении 2 атм. (132,9 0С.) в
течение 20 минут.
Белье и материал стерилизуются в биксах или
матерчатых двухслойных мешках.

25. Виды укладки в стерилизационный бикс

а) универсальная: укладывают операционное белье и
перевязочный материал для одной небольшой
типичной операции.
б) целенаправленная: укладывают операционное
белье и перевязочный материал для определенного
вида операций.
в) видовая: укладывают определенный вид белья
или перевязочного материала.

26. Стерилизация шовного материала

В настоящее время основным способом стерилизации шовного
материала является лучевая стерилизация в заводских
условиях. Шовный материал стерилизуется и в упаковке
поступает в лечебные учреждения.
Классические методы стерилизации шелка (метод Кохера) и
кетгута (метод Ситковского в парах йода, методы Губарева и
Клаудиуса в спиртовом и водном растворах Люголя) в
настоящее время практически оставлены из-за длительности,
сложности и не достаточной эффективности.
В условиях стационара стерилизуются капрон, лавсан и
металлические скрепки. Для их стерилизации используется
кипячение в течение 15 минут в растворе С-4 (первомур);
автоклавирование при давлении 2 атм. в течение 20 минут.
После стерилизации шовный материал следует хранить в 96%
спирте.

27. Способы контроля стерильности

Прямой способ
Непрямой способ

28. Прямой способ контроля стерильности

Прямым методом является бактериологическое
исследование: берут посев с рук хирурга,
операционного поля, белья и отправляют в
бактериологическую лабораторию. Метод самый
точный, единственным недостатком является
только то, что результат становится известен
только через 3-5 суток. Поэтому посев
проводится в плановом порядке раз в 7-10 дней и
является показателем эффективности
асептических мероприятий.

29. Непрямой способ контроля стерильности

Непрямые методы позволяют определить температуру,
при которой проходила стерилизация. При
автоклавировании в биксы укладывают ампулы с
веществами, имеющими температуру плавления
около 110-120 оС (бензойная кислота, резорцин,
антипирин). Если вещество расплавилось, то
материал считают стерильным. При стерилизации в
сухожаровом шкафу используются вещества с
температурой плавления более 180 оС (аскорбиновая
кислота, янтарная кислота, тиомочевина). Вместо
ампул можно использовать термоиндикатор или
максимальный термометр.

30. Обработка рук хирурга

Метод Спассокукотского-Кочергина
(классический метод):
Механическая очистка (двумя щетками с мылом по 5
мин. под проточной водой).
Мытье рук в 2 тазиках с нашатырным спиртом (0,5% рр по 3 мин.).
Обработка рук спиртом (96%, 5 мин.).
Обработка ногтевого ложа пальцев кисти раствором
йода.

31. Обработка рук хирурга

Ускоренный метод:


Дважды по три минуты тщательно протирают руки
до середины предплечья салфеткой, смоченной
0,5% спиртовым раствором хлоргексидина
(пливасепта).

32. Обработка рук хирурга

Ускоренный метод – раствор С4:
Моют руки в теплой проточной воде с мылом.
Высушивают стерильной салфеткой.
Моют руки в тазике с раствором С4 в течение 1
мин.

33. Уборка операционных

производится влажным способом. Различают:
1. Предварительная - проводится ежедневно утром перед началом
операций. Протирают антисептиками пол, стены, подоконники и др.,
чтобы убрать пыль, которая осела за ночь.
2. Текущая - в процессе операции убирают упавшие на пол предметы,
вытирают пол, загрязненный кровью и другими жидкостями. По
окончании операции обрабатывают операционный стол, пол вокруг
стола и испачканную мебель.
3. Заключительная - после окончания операционного дня. Это мытье
пола, стен (на высоту человеческого роста), протирают мебель.
4. Генеральная - мытье операционной один раз в 7 - 10 дней горячей
водой с мылом и антисептиками, включая потолок. Протирают
мебель и аппаратуру.
Уборка операционных осуществляется влажным способом (1%
хлорамин Б, 3% перекись водорода с 0,5% раствором моющих
средств, 0,2% дезоксон - 1, 2% дихлор - 1 и др.).
Для уменьшения бактериальной загрязненности операционных
используют воздухоочистители, бактерицидные лампы.

Для обеспечения асептической работы необходимо хорошо знать возможные источники попадания микробов в рану. Это два источника: экзогенный и эндогенный.

Экзогенной считается инфекция , попадающая в рану из внешней среды: из воздуха - пыль, капли жидкости (воздушно-капельный путь);

с предметами, соприкасающимися с раной: инструментарий, белье, перевязочный материал, руки хирурга (контактный путь);

Имплантационный путь передачи инфекции . Имплантация – внедрение, вживление в организм больного искусственных чужеродных материалов и приспособлений с определенной лечебной целью. Источниками имплантационной инфекции являются:

Шовный материал;

Дренажные трубки;

Катетеры;

Протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т.д.;

Специальные металлические приспособления (скобки и скрепки из сшивающих аппаратов, спицы, шурупы, пластины для остеосинтеза);

Кава - фильтры, спирали, стенты;

Трансплантированные органы.

Эндогенной называется инфекция, источник которой находится в организме больного. Источники эндогенной инфекции:

 кожные покровы больного;

 желудочно-кишечный тракт;

 ротовая полость;

 очаги «дремлющей» инфекции: кариозные зубы, воспалительные заболевания мочевыводящих путей, хронический тонзиллит, хронический бронхит и т.д.

Пути попадания эндогенной инфекции в рану:

 по кровеносным сосудам (гематогенный),

 по лимфатическим сосудам (лимфогенный);

 непосредственный (контактный)

Профилактика эндогенной инфекции включает выявление возможных очагов эндогенной инфекции и их санация перед выполнением плановой операции.

Если при обследовании выявлен источник эндогенной инфекции (кариес, аднексит и др.), плановую операцию нельзя выполнять до ликвидации воспалительного процесса . После перенесенного инфекционного заболевания запрещается выполнение плановой операции в течение 2-х недель после полного выздоровления.

Принципы организации и планирования хирургического отделения

Принцип соблюдения правил асептики и антисептики лежит в основе организации хирургического стационара . Большинство больниц строится в зеленых, наиболее чистых районах. Хирургические отделения не должны располагаться на первом этаже стационара, по возможности палаты должны быть рассчитаны на 1-2 человек. Площадь палат общехирургического профиля определяется из расчета 6,5 - 7,5 м 2 на одну койку при высоте помещения не менее 3 м и ширине не менее 2,2 м.. Стены должны быть выложены плиткой или окрашены краской. Поверхность стен, полов и потолков помещений должна быть гладкой, без дефектов, легкодоступной для влажной уборки и обработки моющими и дезинфицирующими средствами. Покрытия пола должно плотно прилегать к основанию. Сопряжение стен и полов должно иметь закруглённое сечение, стыки должны быть герметичными. Полы должны быть каменными или заливными, либо покрыты линолеумом.

При использовании линолеумных покрытий края линолеума у стен должны быть подведены под плинтуса. Швы, примыкающих друг к другу листов линолеума, должны быть пропаяны. В вестибюлях полы должны быть устойчивы к механическому воздействию (мраморная крошка, мрамор, мозаичные полы и др).

Ориентация окон палат и лечебно-диагностических кабинетов хирургического отделения может быть любая, соотношение площади окон и пола должна составлять 1:6, 1:7. Температура воздуха в палатах -18-20 0 С, влажность воздуха - 50-60%.

Вентиляция воздуха достигается путем открытия форточек. Для обеззараживания воздуха применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки палат и не менее часа после нее, так как во время уборки в воздух поднимается большое количество бактерий.

В помещениях хирургических стационаров больниц, построенных по современным типовым проектам, устраивается кондиционирование воздуха и механическая приточно-вытяжная вентиляция. Подачу приточного воздуха следует осуществлять сверху вниз, причем расположение приточных и вытяжных отверстий должно быть таким, чтобы исключалась возможность образования в помещении невентилируемых мест.

Мебель должная быть легкой, без сложной конфигурации поверхностей, иметь колесики для передвижения. Количество мебели следует максимально ограничивать в соответствии с потребностями.

В структуру хирургического отделения входят: палаты для больных, пост палатной медсестры, процедурный кабинет, чистая и гнойная перевязочные, санитарная комната, лечебные и диагностические кабинеты, кабинеты заведующего отделением и старшей медсестры, ординаторская, сестринская.

В хирургическом отделении должны быть туалеты, ванная, клизменная, отдельно должны быть туалет и душ для медицинского персонала.

Для кормления больных предусмотрена столовая. В хирургическом отделении кормление больных проводится, согласно, диеты, назначенной врачом. Кормление тяжёлобольных осуществляется средним и младшим медперсоналом.

Важное, значение для профилактики внутригоспитальной инфекции имеет правильное размещение больных в отделении. Чёткое разделение «чистых» и «гнойных» больных.

Обязательно каждому больному выделяют индивидуальные предметы ухода (подкладные судна, утки), которые дезинфицируют после использования каждым больным.

В структуре хирургического отделения с коечным фондом на 30 и более пациентов необходимо иметь две перевязочные - для проведения «чистых» и «грязных» перевязок . В хирургическом отделении, имеющем до 30 коек, допускается наличие одной перевязочной. Очередность перевязок планируется с учетом чистоты раны. При подготовке к работе перевязочной до начала работы проводится влажная уборка помещения перевязочной с обработкой всех поверхностей дезинфицирующими средствами.

Перевязочный стол для пациента (кушетка) дезинфицируют способом протирания и накрывают чистой простыней (пеленкой) перед каждой новой перевязкой.

Медицинская сестра и врач должны работать в халате (при необходимости – и в фартуке), перчатках, шапочке, маске. Предпочтительны халаты однократного применения.

Снятие повязки проводится перевязочной сестрой в чистых (нестерильных) перчатках.

Лечащий врач (оперирующий хирург) проводит перевязку в стерильных перчатках, которые меняет при каждой перевязке.

Все предметы со стерильного перевязочного стола берутся стерильным корнцангом (пинцетом).

По окончании перевязки отработанный материал, использованные перчатки, халаты сбрасывают в ёмкость для сбора отходов класса «Б», и в дальнейшем подвергают дезинфекции и утилизации.

Инструменты многократного применения после перевязки дезинфицируют способом погружения в дезинфицирующий раствор, затем подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации (в ЦСО – при его наличии в лечебной организации).

В конце рабочего дня проводят уборку перевязочной дезинфицирующими средствами. Для обеззараживания воздуха в перевязочных, процедурных кабинетах применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки и не менее часа после нее. Бактерицидная лампа создает вокруг себя стерильную дозу до 2 - 3 метров. Один раз в неделю проводят генеральную уборку в перевязочной, о чем делают запись в журнале регистрации уборок.

Контроль обсемененности разных объектов и воздуха в хирургических отделениях осуществляется 1 раз в месяц. Выборочный контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья и др. проводят 1 раз в неделю.

Для профилактики воздушно-капельной инфекции большое значение имеет соблюдение правил личной гигиены медперсоналом, отстранение от работы сотрудников с простудными и гнойничковыми заболеваниями.

Согласно приказу № 720 1 раз в 3 месяца проводится обследование медперсонала на носительство стафилококка в носоглотке. При положительном ответе сотрудник отстраняется от работы, в течение 3-4 дней закапывает в нос антисептик, регулярно проводит полоскания зева, после чего у него повторно берут мазок из носоглотки.

В профилактике внутригоспитальной инфекции в хирургическом отделении играет роль правильная утилизация отходов и уборка отделения.

Все отходы делятся на 5 групп и подлежат утилизации после соответствующей подготовки.

Асептика (греч. а — без + sëptikos — вызывающий нагноение, гнилостный) — комплекс мероприятий, направленных на предотвращение проникновения микроорганизмов в рану и в организм в целом. Асептика преследует основную цель: защита организма больного и особенно раны от контакта с внешним бактериально зараженной средой, уничтожение микроорганизмов с помощью физических, химических, биологических и механических методов на всем, что может контактировать с раной больного, а также на предметах, которые могут источником распространения внутрибольничной инфекции. Основной закон асептики: «Все, что контактирует с раной, должно быть свободным от бактерий».

Метод асептика является дальнейшим развитием метода антисептики и тесно связанный с ним (см. ). Основоположники А. — немецкие хирурги Э. Бергманн (E. Bergmann) и С. Шиммельбуша (С. Schimmelbush), русские — М.С. Субботин, П.И. Дьяконов. Современная А. предусматривает уничтожение микробов при различных путях передачи инфекции: воздушном, капельном, контактной и имплантационном. Источником воздушной инфекции являются микробные клетки, находящиеся в воздухе. Основой профилактики воздушной инфекции является борьба с запыленностью воздуха в помещении стационара, перевязочных залах, операционных блоках.

Основные мероприятия, направленные на уменьшение воздушной инфекции, сводятся к: 1) оптимального вентилирования операционных и перевязочных (в т.ч. кондиционирования воздуха) 2) ограничение посещения операционных и сокращение передвижения по ним персонала, 3) защиты от статического электричества, которая вызывает рассеяния пыли, 4) влажной уборки помещений, регулярного проветривания и облучение операционной УФ-светом, 5) сокращение времени контакта открытой раны с воздухом.

Капельная инфекция — разновидность воздушной инфекции, когда источником инфицирования является воздух, загрязненный капельками слюны изо рта и дыхательных путей больного и персонала или мелкими каплями других инфицированных жидкостей. Основные мероприятия, направленные на борьбу с капельной инфекцией — запрет разговоров в операционной, обязательное ношение масок, прикрывают рот и нос медперсонала, а также своевременное текущая уборка операционных. Контактная инфекция — инфицирование раны нестерильными инструментами, инфицированными руками, материалами и др..

Профилактика контактной инфекции заключается в стерилизации всего, что соприкасается с раной, вводится в организм человека во время операций, перевьязувань, инъекций и т.п.. Стерилизация проводится физическими и химическими методами. К физическим методам относится тепловая стерилизация: пастеризация, кипячение, стерилизация паром под давлением, сухим жаром; УЗ-и лучевая стерилизация. К химическим методам стерилизации относится применение химических веществ: пары формалина, растворов йода, хлоргексидина биглюконата подобное. Имплантанционная инфекция — инфекция, которая вносится в рану с шовным материалом, тампонами, дренажами, протезами и т.п.

Профилактика такой инфекции состоит в их тщательной стерилизации. Для обеспечения мер асептики чрезвычайно большое значение имеют организационные мероприятия (правильное планирование хирургических отделений и операционных блоков, использование мониторинговых систем для наблюдения за больными) и санация персонала. Знание и строгое соблюдение правил А. всеми сотрудниками является законом работы в хирургической практике.

В фармации создания асептических условий проведения технологического процесса изготовления лекарств имеет свою специфику. Так, необходимо предотвращать контаминации оборудования, помещений, исходного сырья, материалов, промежуточной продукции жизнеспособными микроорганизмами и механическими частицами с целью обеспечения стерильности готовой продукции.

Производство лекарств в асептических условиях в аптеках и на ФП осуществляется в специальных «чистых» помещениях, где нормируется чистота воздуха по содержанию микробных тел и механических частиц. В такие помещения доступ персонала и поступления исходного сырья, материалов, полупродуктов и оборудования разрешается только через воздушные шлюзы. В «чистых» зонах должен поддерживаться надлежащий степень чистоты, а вентиляционный воздух, поступающий в таких зон, должна проходить очистку с использованием фильтров соответствующей эффективности.

Для производства стерильной продукции в асептических условиях на фармацевтических производствах выделяют четыре класса зон чистоты: класс А (зона наполнения, укупорки, смешивание в асептических условиях и др.). Требует минимального риска контаминации с ламинарным потоком воздуха; класс В — окружающая среда для зоны класса А; классы С и D — чистые зоны для проведения других, менее критичных технологических операций.

Для изготовления стерильных лекарств в аптеках необходимо наличие асептического блока, который должен иметь не менее 3 комнат: передасептичну (шлюз), асептическую и аппаратную. Асептические условия изготовления лекарств в соответствующих производственных помещениях аптек и ФП обеспечиваются за счет проведения технологических и санитарных мероприятий: установка стерильной приточной вентиляции и рециркуляционных очистителей воздуха, увеличение кратности воздухообмена, применение бактерицидных излучателей, специальной подготовки помещений и санации персонала.

Асептика – комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микробов в рану.

Цели асептики: защита организма больного и особенно раны от контакта с внешней бактериально-зараженной средой; уничтожение микроорганизмов с помощью физических, химических, биологических и механических методов на всем, что может соприкасаться с раной.

Основной принцип асептики : все, что приходит в соприкосновении с раной должно быть свободно от бактерий, т.е. стерильно.

Асептика включает в себя стерилизацию белья, инструментов, перевязочного материа­ла, обеззараживание рук хирурга, дезинфекцию помещений. Основой асептики является стерилизация и дезинфекция.

Стерилизация - метод, обеспечивающий гибель в стерилизуемом материале вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов.

Дезинфекция (обеззараживание) - это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение или удаление возбудителей заразных болезней в окружающей человека среде, в том числе и в живых организмах (членистоногие и грызуны).

Способы дезинфекции:

Механический: влажная уборка помещений, мытье, стирка, вытряхивание, фильтрация воздуха и воды.

Физический: ультрафиолетовое облучение, кипячение (100 °C), обработка паром (80 °C) и горячим воздухом (170 °C).

Химический: применение химических средств, губительно действующих на возбудителей инфекционных заболеваний (хлорсодержащие препараты, перекись водорода, спирты, чистые растворимые фенолы и т.д.).

Антисептика - комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране, создание в ране условий, неблагоприятных для развития микробов и проникновения их вглубь тканей.

Антисептика осуществляется механическими, физическими, химическими и биологическими способами.

Механическая антисептика – удаление из раны видимых загрязнений.

Физическая антисептика – это кварцевое облучение раны, введение в нее смоченных тампонов и турунд гипертоническим раствором хлорида натрия.

Наибольшее значение имеет химическая и биологическая антисептика, т.е. применение различных веществ, уничтожающих попавшие в рану микробы или замедляющие их размножение.

Химические антисептики. Биологические антисептики.

Химическая антисептика обеспечивает уничтожение микробной флоры в ране при помощи различных химических соединений. В группу химических антисептиков входят препараты, применяемые для обеззараживания рук, операционного поля, инструментов и т. д.

Раствор перекиси водорода - является слабым дезинфицирующим средством, но обладает хорошим дезодорирующим (уничтожающим запах) действием. Применяют перекись водорода в виде 3 % раствора. Раствор перекиси водорода широко применяют для размачивания засохших повязок, при перевязках.

Калия перманганат - раствор обладает слабым дезинфицирующим действием. Для обработки гнойных ран применяют 0,1-0,5 % растворы, как дубящее средство при ожогах, язвах, пролежнях- 5% растворы.

Борная кислота – применяют в виде 2% раствора для промывания слизистых оболочек, ран, полостей.

Раствор йода - применяют в виде 5-10 % спиртового раствора для дезинфекции операционного поля и рук хирурга и для дезинфекции кожи при ранениях.

Бриллиантовый зеленый – применяют 1% спиртовой раствор для стерилизации инструментов, смазывания кожи при гнойничковых поражениях, ссадинах и царапинах.

Хлорамин Б - оказывает антисептическое и дезинфицирующее действие. Применяют 0,5-3% растворы для промывания ран, дезинфекции рук, неметаллических инструментов.

Дихлорид ртути (сулема) – сильнейший яд, используют в разведении 1:1000. Применяют для дезинфекии предметов ухода за инфекционными больными и перчаток.

Ляпис (нитрат серебра - дезинфицирующее средство для промывания гнойных ран (1-2% раствор), для прижигания ран, при избыточных грануляциях (10-20% раствор). Сильный антистатик.

Спирт этиловый - применяют 70-96% растворов для дизенфекции и дубления кожи рук хирурга, подготовки и хранения стерильного шелка, дизинфекции инструментов.

Колларгол - обладает бактерицидным, вяжущим и прижигающим действием. Для спринцеваний, клизм, промываний глаз, полостей носа применяют 0,5-2 % растворы, для прижигании- 5-10 % растворы.

Фурацилин - является хорошим антисептиком, действующим на большинство гноеродных микробов. Применяют в растворе 1:5000 для промывания гнойных ран, полостей, ожоговых поверхностей, пролежней.

Раствор аммиака 10 % - применяют для мытья рук, обработки загрязненных ран и операционного поля 0,5% раствор..

Сульфаниламиды (норсульфазол, этазол, сульфадимезин, сульгин, фталазол). Для профилактики инфекции в ране сульфаниламиды вводят через рот, но их можно применять и местно в виде присыпок, эмульсий, мазей.

Биологическая антисептика направлена на повышение защитных сил организма, создание неблагоприятных условий для развития микроорганизмов в ране. К биологическим антисептикам относятся антибиотики и препараты, повышающие зашитые функции организма.

Антибиотики - вещества микробного, животного, растительного происхождения, избирательно подавляющие жизнедеятельность микробов.

В зависимости от характера действия различают антибиотики узкого (пенициллины), широкого (тетрациклины) и промежуточного (макролиды) спектра действия. Антибиотики применяют местно (промывание и орошение ран, повязки с мазями и эмульсиями из антибиотиков) и внутрь (через рот, внутримышечно, подкожно и внутривенно).

Бактериофаги – препараты, содержащие вирусы, которые репродуцируются в бактериальной клетке и вызывают ее гибель. Их применяют для лечения гнойных ран, промывания полостей, а при сепсисе вводят внутривенно.

Протеолитические ферменты – лизируют мертвые ткани, оказывают противовоспалительное6 действие. Применяют место и дляинъекций, внутривенных введений и ингаляций.

Сыворотки – средства для пассивной иммунизации.

Анатоксины - средства для активной иммунизации.

Асептика, определение. Основной закон асептики. Основные способы стерилизации инструментов, перевязочного материала, белья. Контроль стерильности.

Асе́птика - комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану.

Асептика обладает несомненными преимуществами перед антисептикой в смысле результатов лечения, а также потому, что при асептическом способе лечения ран не бывает отравлений, которые возможны при применении некоторых антисептических средств.

Основное правило асептики заключается в том, чтобы все, что соприкасается с раной, было стерильно, т. е. надежно обеззаражено, свободно от жизнеспособных бактерий.

Стерилизация - это освобождение объектов внешней среды от различных микроорганизмов с помощью физических и химических способов (обеззараживание, обеспложивание). Технология стерилизации включает следующие этапы: дезинфекция, очистка материала, помещение его в контейнеры и стерилизаторы, собственно стерилизация, оценка ее эффективности и хранение стерильного материала. Различают стерилизацию паровую (водяным паром поддавлением), воздушную (горячим воздухом) и газовую (стерилизующим газом), химическую, лучевую (ионизирующим излучением, ультрафиолетовыми лучами).

Паровой метод:

для стерилизации перевязочного материала, белья, инструментов:

2,1 АТМ (температура пара - 132,9° С) - 20 минут. 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (многоразовые шприцы, стекло).

для стерилизации резиновых изделий: 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (каждые 5 мин. продувка).

Воздушный метод:

Для стерилизации стекла, инструментов Сухожаровой шкаф (темп. воздуха - 180° С) - 60 мин. Сухожаровой шкаф (температура воздуха - 160° С) - 150 мин.

Растворами химических соединений (инструменты, эндоскопы): 6% перекись водорода - 6 часов; лизоформин 3000 8% - 1 час;

сайдекс 2% - 10 час; глутаровый альдегид 2,5% - 6 часов.

Газовый метод (стоматологические, хирургические инструменты, иглы для рефлексотерапии и т.д.): окись этилена; формальдегид

Операционное белье и материал (салфетки, бинты, перчатки, шовный материал и др.) стерилизуются и хранятся в специальных коробках-барабанах (биксы Шиммельбуша). Крупные биксы бывают двух типов: без фильтра (с боковыми отверстиями, перекрывающимися металлической лентой-поясом с натяжным замком) и с фильтром (с отверстиями в дне и крышке коробки, перекрытыми текстильными фильтрами - мадеполам, фланель и др.).

К перевязочному материалу относятся салфетки, марлевые шарики, тампоны, турунды, биксы; к операционному белью - халаты, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы.

После подготовки перевязочный материал и операционное белье укладываются в биксы или в полотняные мешки. После стерилизации срокхранения перевязочного материал а и белья в биксах - 48 ч, в мешках - 24 ч (если они не вскрывались).

Неинфицированные инструменты моются проточной водой в течение 5 мин и замачиваются в теплых (до 50 °С) моющих растворах на 15-20 мин. Примерные составы моющих растворов: пергидроль 20 г, стиральный порошок 5 г, вода - 975 мл; 2,5% раствор перекиси водорода - 200 мл, стиральный порошок 5 г, вода - 775 мл. Инструменты моются в таком растворе ершиком и щетками, прополаскиваются теплой водой 5 мин и дистиллированной - 1 мин. Затем в суховоздушном стерилизаторе при температуре 85 °С высушиваются.

Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, помещаются в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем моются в этом же растворе щетками, ополаскиваются проточной водой и далее по изложенной методике для неинфицированных инструментов. Специальной обработке подвергаются инструменты, контактировавшие с анаэробной инфекцией (замочка на 1 ч в 6% растворе перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства, обмывание и кипячение в течение 90 мин, затем - по вышеизложенной методике.

Стерилизация шовного материала может быть проведена в заводских условиях гамма-излучением.

Ампулированные мотки кетгута, шелка, капрона и других нитей хранятся при комнатной температуре и используются при необходимости.

Льняные и хлопчатобумажные нити,лавсан, капрон стерилизуются в автоклаве. Шелк, капрон, лавсан, хлопок стерилизуют также по методу Кохера.

Кетгут стерилизуют после обезжиривания (замачивание в эфире на 24 ч) по методам Клаудиуса (с использованием раствора Люголя и 96% раствора спирта), Губарева (раствора Люголя), Ситковского (в 2% растворе йодида калия) и др.

Контроль за стерильностью медицинских изделий осуществляется бактериологическими лабораториями лечебно-профилактических учреждений и санэпидслужбы.

Классификация хирургического инструментария. Хранение инструментов. Подготовка инструментов к работе. Техника накрывания перевязочного стола в перевязочной. Контроль стерильности инструментов.

Хирургические инструменты можно разделить на инструменты общего назначения и специальные инструменты.

1. Для разъединения тканей : скальпели, ножи, ножницы, пилы, долота, остеотомы, кусачки и др. К режущим инструментам относятся также резекционные ножи, применяемые для разрезания плотных сухожильных тканей вблизи суставов, и ампутационные ножи.

2. Вспомогательные инструменты (расширяющие, фиксирующие и др.: пинцеты анатомические и хирургические; тупые и острые крючки; зонды; большие расширители раны (зеркала); корнцанги, зажимы Микулича и др.

3. Кровоостанавливающие : зажимы (типа Кохера, Бильрота, Холстеда, «Москит» и др.) и лигатурные иглы Дешана.

4. Инструменты для соединения тканей : иглодержатели разных систем с колющими и режущими иглами.

Используемые при манипуляциях хирургические инструменты должны быть стерильными.

Хирургические инструменты передают из рук в руки тупыми концами в сторону принимающего, чтобы режущие и колющие части не травмировали рук. При этом передающий должен держать инструмент за середину.

Большинство хирургических инструментов изготавливается из хромированной нержавеющей стали.